Césarienne chez la lapine présentant un
accouchement difficile
Esther van Praag, Ph.D.
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L’accouchement
chez les lapines présente rarement un problème, à moins qu’elles ne soient
stressées ou sont exposées à un environnement stressant. Ceci peut amener des
complications telles que la toxémie ou l’anorexie. Un avortement naturel est
rare chez les lapines, et est seulement observée après le 24ième jour de la
grossesse. La
présence de fœtus ainsi que leur nombre peut être établi à partir du 10ième
jour de la grossesse. Autour de cette période, les fœtus forment des masses
en forme de grappes au niveau de l’abdomen ventral. Plus tard, il devient
difficile de différencier les fœtus, à cause de la masse intestinale et des
autres organes, qui les entourent. La gestation
dure entre 29 et 32 jours, exceptionnellement 35 jours. L’accouchement est
rapide et se fait en général en moins de 30 minutes. Si la femelle est
fatiguée, souffre de douleurs ou si l’intervalle de naissance entre les
nouveau-nés est de plus d’une heure, une assistance médicale est nécessaire. Procédure de
césarienne
La rétention de fœtus dans l’utérus peut
être déterminée par palpation, échographie ou par radiographie. Si aucune
obstruction physique n’est observée, l’accouchement peut être stimulé avec
l’administration de calcium et d’ocytocine (1-2 IU/kg, IV, IM). Une
césarienne apparaît nécessaire, , s’il y a : • un
blocage ou d’un rétrécissement au niveau de l’appareil reproducteur, • une
taille ou position anormale du fœtus ou lorsqu’une inertie utérine est
diagnostiquée. Elle
doit être réalisée sans délai sous anesthésie complète. La procédure n’est
pas compliquée, mais doit être rapide afin d’éviter l’asphyxie des fœtus. La
femelle anesthésiée est placée en position dorsale, avec la tête légèrement
relevée. Une incision est faite dans la cavité abdominale (laparotomie) au
niveau de la ligne médiane. L’utérus gravide est localisé et sorti hors de
l’abdomen, afin d’extraire les fœtus. La convalescence de la femelle se passe en
général sans incidents. Afin
d’éviter tout futur problème de naissance non-désirée chez la lapine, il est
recommandé de procéder à une stérilisation (ovariohystérectomie).
Pour plus de détails au sujet de la stérilisation, voir:
”Appareil reproducteur femelle et ovariohystérectomie
(stérilisation)”
Césarienne
chez une lapine en images
Soins
post-chirurgicaux
L’administration
de l’ocytocine (1-2 IU/kg, IM, IV) afin de stimuler les contractions et la
production de lait. L’administration de médicaments analgésiques comme par
exemple la buprenorphine, suivie de méloxicame
durant quelques jours est absolument nécessaire. En effet, la douleur
entraîne des réponses hormonales et physiologiques, ce qui cause une
diminution du mouvement péristaltique gastro-intestinal, retarde la prise de
nourriture et la guérison. On observe parfois la présence de sang dans l’urine 24
à 48 h. après l’opération chirurgicale. Remerciements
Un grand merci à Akira Yamanouchi
(Veterinary Exotic Information Network,
Japan) et à Karen Comish (Israël)
pour la permission d’utiliser leurs photos. Further
Information
Harris
WH, Yamashiro S, Stopps TP. The effects of cesarean section anesthesia on
heat loss and heat production in the newborn rabbit. Can J Comp Med. 1983; 47(1):79-83.
Morgan
DR. Routine birth induction in rabbits using oxytocin. Lab Anim. 1974;
8(2):127-30.
Jenkins
JR. Surgical sterilization in small mammals. Spay and castration. Veterinary
Clin North Am Exot Anim Pract. 2000; 3(3):617-27.
Millis DL, Walshaw R. Elective castrations
and ovariohysterectomies in pet rabbits. J. Am. Anim Hosp. Assoc. 1992:
491-497
Quesenberry
KE, Carepenter JW, Quesenberry P. Ferrets,
Rabbits and Rodents: Clinical Medicine and Surgery Includes Sugar Gliders and
Hedgehogs, Elsevier Health, 2004.
Harcourt-Brown
F. Textbook of Rabbit Medicine, UK: Butterworth-Heinemann, 2001.
Flecknell
P , editor. BSAVA Manual of Rabbit Medicine and Surgery, Gloucester, UK:
British Small Animal Veterinary Association, 2000.
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