Trichostrongylus
calcaratus
Esther van
Praag, Ph.D.
Tłumaczenie:
Teresa Pyza, lek. wet. Dorota Pilich
MediRabbit.com is funded solely by the
generosity of donors. Every donation, no matter what
the size, is appreciated and will aid in the continuing research of medical
care and health of rabbits. Thank you |
Trichostrongylus
oraz inne gatunki Trichostrongylus,
występują u dzikich królików, szczególnie u wschodnich dzikich
królików amerykańskich (Sylvilagus floridanus) w Stanach
Zjednoczonych i rzadko występują u królików domowych. Pasożyt
ten nie stanowi zagrożenia zdrowia publicznego. Trichostrongylus
calcaratus umiejscawia się w jelicie cienkim
albo okrężnicy królika; nie jest znana jakakolwiek migracja do
innych części jelit. Króliki zarażają się
jedząc skażone larwami pożywienie (siano, trawę,
świeże warzywa). Jaja produkowane przez samicę
są wydalane z odchodami i larwy wylęgają się poza
organizmem żywiciela. Rozmiar jaj waha się pomiędzy 80 i 90
µm. W momencie składania są one zwykle segmentowane i rozwijają
się w zakaźną larwę w ciągu 6 dni. Larwy stadium L1 oraz
L2 żywią się drobnoustrojami, stadium L3,
osiągane po 16 – 18 dniach nie odżywia się i można
się nim zakazić przez połknięcie. L3, L4 i L5
są niedojrzałymi postaciami dorosłymi, które rozwijają
się w formy dorosłe w przewodzie pokarmowym. Ich cykl życia
jest prosty, bez żywicieli
pośrednich.
Robaki są smukłe, z małymi
przednimi zakończeniami bez torebki gębowej. Samca można
poznać po jego asymetrycznym grzbietowym promieniu oraz dwóch krótkich,
prawie równych szczecinkach. Samica ma otwór płciowy wielkości ok.
1 mm lub nieco mniejszy, mierząc od końca ogona. Innych członków rodziny Trichostrongylus
również znajdowano u królików. Można je rozróżnić na
podstawie rozmiaru i struktur szczecinek. Trichostrongylus affinis
Występuje w Stanach Zjednoczonych u
dzikich królików (Sylvilagus floridanus) i zajęcy
amerykańskich (Lepus americanus), rzadko u królików domowych . Zakaża
jelito ślepe oraz jelito grube. Jaja
(przeciętny rozmiar 61*37 µm) wędrują z kałem, larwy
wylęgają się i rozwijają na zewnątrz żywiciela
i stają się zakaźne po 10 –11 dniach. Dorosłe robaki
mają przeciętną długość 5 – 7,5 mm dla samców
oraz 8,7 do 9,3 mm w przypadku samic. Samiec posiada szczecinki podczas gdy
samica ma otwór płciowy na końcu. Ciężkie
zarobaczenie może powodować utratę wagi. Trichostrongylus retortaeformis
Ten
pasożyt występuje tylko w Europie, na Wyspach Brytyjskich,
został też zawleczony do Australii. Można go znaleźć
w jelicie cienkim królików i zajęcy (Lepus europaeus). Jego cykl
życia jest prawdopodobnie zbliżony do cyklu T. affinis. Jaja
są wielkości 87*33 µm. Można je znaleźć na
pastwiskach, gdzie występuje najmniej zmian klimatycznych, co
więcej, nie rozwiną się jeśli maksymalna temperatura nie
przekroczy 10°C. Larwy są w stanie migrować wewnątrz
roślinności w poszukiwaniu wilgotnych warunków. Dorosłe robaki
mierzą pomiędzy 6,8 a 8,4 mm długości w przypadku samców
oraz 9,6 a 10,4 mm w przypadku samic. Charakteryzują się cienkimi,
poprzecznymi i wzdłużnymi rowkami. Zanotowano,
że patogeneza tego robaka z rodzaju Nematodae jest wystarczająca do
zmniejszenia populacji królików. Badanie klinicznie obejmuje badanie
flotacyjne kału w temperaturze 25°C, temp. 35°C jest śmiertelna. Trichostrongylus ransomi
Zaobserwowano występowanie u Sylvilagus
floridanus w Luizjanie, Stany Zjednoczone, ale nie jest to typowy
pasożyt królików. Umiejscawia się w jelicie cienkim. Cykl
życia jest nieznany, ale prawdopodobnie zbliżony do cyklu T.
affinis. Jaja mają rozmiar około
65*33µm. Dorosłe robaki są małe: 2,2 – 3 mm w przypadku samców
oraz 3-3,5 mm w przypadku samic. Trichostrongylus colubriformis (T. instabilis)
Kosmopolityczny pasożyt jelita
cienkiego bydła i innych przeżuwaczy, ale Lagomorpha są
również zakażane w sposób naturalny tym pasożytem. Objawy kliniczne
Patogenność
tych robaków jest niewielka i zakażenie zwykle jest bezobjawowe. Ciężkie
zakażenia mogą jednak prowadzić do utraty wagi i/lub anemii
oraz zaostrzyć inne dolegliwości królików, takie jak biegunka czy
wysoka eozynofilia oraz czasami śmierć. Warstwa śluzówkowa
jelita jest często podrażniona, co może prowadzić do
utraty krwi, czasami też obserwuje się obecność guzków. Obecność Trichostrongylus sp.
diagnozuje się za pomocą badania flotacyjnego kału w kierunku
obecności jaj typu Strongyle w odchodach. Hodowla tych jaj do stadium L3
jest konieczna w przypadku identyfikacji szczegółowej. Dorosłe
osobniki można zidentyfikować w jelicie cienkim. Leczenie
Dalsze
informacje
Anderson RC (2000) Nematode Parasites of Vertebrates. Their
Development and Transmission. 2nd Ed. CABI Publishing, Oxon, UK. Andrews
CL, Davidson WR. Endoparasites of selected populations of cottontail rabbits (Sylvilagus floridanus) in the southeastern United States. J Wildl Dis. 1980; 16(3):395-401. Audebert F, Cassone J, Hoste H, Durette-Desset MC. Morphogenesis and distribution
of Trichostrongylus retortaeformis
in the intestine of the rabbit. J Helminthol.
2000; 74(2):95-107. Audebert F, Hoste H, Durette-Desset MC. Life cycle of Trichostrongylus retortaeformis in its natural host, the rabbit (Oryctolagus
cuniculus). J Helminthol. 2002; 76(3):189-92. Boag B. The incidence of helminth parasites from the wild rabbit Oryctolagus
cuniculus (L.) in eastern Scotland. J Helminthol.
1985; 59(1):61-9. Boag B, Iason G. The occurrence and abundance of
helminth parasites of the mountain hare Lepus timidus
(L.) and the wild rabbit Oryctolagus cuniculus (L.) in Aberdeenshire, Scotland. J Helminthol.
1986; 60(2):92-8. Ciordia H BIZZELL
WE, Porter DA, Dixon CF. The effect of culture
temperature and age on the infectivity of the larvae of Trichostrongylus
axei and T. colubriformis
in rabbits and guinea pigs. J Parasitol. 1966;
52(5):866-70. Duwel D, Brech K. Control of oxyuriasis
in rabbits by fenbendazole. Lab Anim. 1981; 15(2):101-5. Hoste H, Reilly
M. Scanning electron microscopy of the jejunal and ileal mucosa of
rabbits infected with Trichostrongylus colubriformis. Ann Rech
Vet. 1988; 19(2):123-8. Hoste H, Mallet
S. Effects of size of Trichostrongylus
colubriformis infections on histopathology of
the mucosa along the whole small intestine in rabbits. Hoste H, Mallet S, Koch C. Trichostrongylus colubriformis
infection in rabbits: persistence of the distal adaptive response to
parasitism after anthelmintic treatment. J Comp Pathol.
1995; 113(2):145-53. Iason GR, Boag
B. Do intestinal helminths affect condition and fecundity of adult mountain
hares? J Wildl Dis. 1988; 24(4):599-605. Molina X,
Casanova JC, Feliu C. Influence of host weight, sex
and reproductive status on helminth parasites of the wild rabbit, Oryctolagus
cuniculus, in Navarra, Spain. J Helminthol.
1999; 73(3):221-5. Prasad D,
The effects of temperature and humidity on the free-living stages of Trichostrongylus retortaeformis.
Can. J. Zool. 1959; 37: 305-316. Purvis GM,
Sewell MM. The host-parasite relationship between
the domestic rabbit and Trichostrongylus colubriformis. Vet Rec. 1971; 89(5):151-2. Strohlein DA,
Christensen BM. Metazoan parasites of the eastern
cottontail rabbit in western Kentucky. J Wildl
Dis. 1983; 19(1):20-3. Wiggins
JP, Cosgrove M, Rothenbacher H.Gastrointestinal parasites of the eastern cottontail (Sylvilagus floridanus) in central Pennsylvania. |
e-mail: info@medirabbit.com